本SOP适应于科沿有道实验室动物实验所有工作人员。
2）：75%酒精+棉球，无菌纱布，生理盐水，10%水合氯醛，2ml注射器；
3）：老鼠固定器(自制)，手术缝合包，6号丝线，止血钳，刀片，手术剪 ，牵引钩，显微手术器械，体视镜。
3.麻醉：按照330ul/100g剂量腹腔注射10%水合氯醛。
4.麻醉后将大鼠以仰卧位固定在解剖板上，颈部备皮，消毒。
5.沿颈部正中切开皮肤。 说明：切开皮肤前最好将结扎动脉的线事先剪好（后面会用到）。
6.钝性分离皮下组织，在分离过程中会看到颌下腺，将腺体轻轻推到一侧，分离到气管前肌后，沿右侧胸锁乳突肌腱向下分离，见到颈动脉鞘后可用拉钩将皮肤肌肉固定好。
7.此时可见到颈总动脉，分离左侧颈总动脉，然后将其结扎。然后暴露右侧术野，分离右侧颈总动脉、颈外动脉及颈内动脉，先将颈外动脉游离、结扎及离断，然后在其深面寻找、沿着颈内动脉近侧向远侧寻找右侧翼愕动脉(pterygopalatine artery, PPA)，找到PPA后，将其游离、结扎。缝合皮下组织、皮肤。术后注意保暖。
8. 一周后进行双侧肾动脉后支结扎： 使用相同方式将大鼠麻醉后，置于俯卧位，定位最后一根肋骨下，背部中线右侧1cm位置纵向切开皮肤2cm-3cm，小心钝性分离肌肉层，打开腹腔，此时用牵引钩拉开皮肤，棉签搽干净出血，右手食指跟中指轻轻挤压切口下面的腹腔，可以清晰看见肾脏，慢慢将肾从腹腔中挤出，左手用蘸有生理盐水的纱布包住肾脏轻轻提起，这时可以看见肾蒂部有脂肪血管，但无法分清血管位置及动脉位置，右手用小镊子慢慢将血管周围的脂肪剥离干净，直到看见2根较大的血管及白色的输尿管，上面一根颜色鲜红的为肾动脉，下面一个颜色较暗的静脉，最下面一根白色的细管为输尿管。
分离出动脉，在确认肾动脉分叉后使用12号丝线结扎肾后动脉，确认肾脏部分缺血坏死后，生理盐水冲洗术野至清亮后，缝合肌肉。同法处理另一侧肾后动脉后，缝合皮下组织、皮肤。术毕待其清醒后，放回笼盒单笼饲养。在术后1周给与盐水饲养。3个月后，处死大鼠。
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